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　　克隆形成实验（Colony Formation Assay），也称为集落形成实验，是一种体外细胞生存能力的测定方法，关键在于检测单个细胞能否生长成包含至少50个细胞的克隆，以测试细胞群中每一个细胞无限分裂的潜能。此方法最初由Puck和Marcus于1956年提出，描述了一种评估单个哺乳动物细胞在培养皿中形成克隆或集落能力的细胞培养技术。克隆形成实验不仅是确定细胞对电离辐射生殖死亡的标准方法，也可用于评估其他细胞毒性剂的有效性。

　　克隆形成实验基于细胞的增殖和分化能力。实验过程中，细胞在处理前或处理后被稀释接种，处理因素可以是基因的过表达或干扰、电离辐射或药物等。随后于1-3周内形成集落，集落经固定和染色，利用显微镜计数克隆数量，以计算克隆形成率。实验关键在于准确的细胞计数和稀释，以确保正确接种数量及准确的计算克隆形成率。

　　4. 药物筛选和毒性测试：在药物开发过程中，克隆形成实验可以用来评估药物对细胞增殖和克隆形成的影响。

　　根据细胞生长方式的不同，克隆形成的培养介质分为两类，即平板克隆和软琼脂克隆。

　　1. 平板克隆形成实验：适用于贴壁生长的细胞，操作相对简单，细胞间可自由接触，利于形成克隆。

　　2. 软琼脂克隆形成实验：适用于悬浮生长的细胞，将细胞悬液与软琼脂混合，利用软琼脂为培养介质，形成克隆。

　　基础培养基，胎牛血清，胰蛋白酶，PBS，6孔板（或培养皿），4%多聚甲醛固定液，结晶紫染液，无菌移液枪和枪头、细胞计数板等细胞培养耗材。

　　① 细胞准备：将细胞或预处理好的细胞用胰蛋白酶正常消化后收集，用完全培养基重悬为单细胞悬液，并计数；

　　② 细胞接种：将细胞悬液浓度调整为1000个细胞/mL，6孔板中每孔接种1000个细胞（不同细胞适宜接种细胞数不同，依实际情况进行）；

　　③ 附加步骤：根据实验设计进行处理，需在细胞开始增殖前进行。如接种后进行辐射处理或药物处理等。

　　④ 细胞克隆培养：继续置于细胞培养箱中培养，大约1-3周，期间每隔3天进行换液并观察细胞状态；

　　⑤ 固定和染色：培养完成后，用PBS洗涤细胞，每孔加入1mL 4%多聚甲醛固定细胞30-60min，再次洗涤后，每孔加入1mL结晶紫染液染色10-20min；

　　⑥ 计数：在显微镜下计数克隆形成的数量，或对整个6孔板及每个孔进行拍照；

　　⑦ 数据分析：可运用Image J软件进行细胞图像处理，得到不同分组中的克隆形成数量，即可计算出处理组细胞存活或增殖相比于对照组的变化。或是计算各组的克隆形成率：克隆形成率 =（克隆数/接种细胞数）×100%

　　琼脂，恒温水浴锅，NBT染液，基础培养基，胎牛血清，6孔板（或培养皿）,无菌移液枪和枪头、细胞计数板等。

　　① 准备琼脂：制备1.2%和0.7%的琼脂，高压灭菌，在42℃恒温水浴锅中维持液态；

　　② 制备底层琼脂：将1.2%琼脂与2×完全培养基以1:1混合（不包含细胞）后铺于6孔板中，总体积1.5mL，37℃孵育30min使其凝固；

　　③ 制备上层细胞悬液：按1:1的比例将0.7%的琼脂与2×完全培养基混匀后，加入0.2mL的单细胞悬液，充分混匀，再加入6孔板中作为上层胶，每孔1.5mL，5000个细胞（可根据需要调整）。待凝固后在最上层加入培养基；

　　④ 细胞克隆培养：继续培养1-3周，期间3天换液一次，并观察细胞状态及克隆大小；

　　⑤ 拍照计数：当每个克隆大于50个细胞时，可进行NBT染色，随后拍照计数；

　　1. 确保细胞悬液的均一性，避免细胞聚集成团，细胞尽可能在悬液中均匀分布；

　　2. 控制细胞接种密度，不同细胞的接种密度可能会有差异，过高或过低都会影响结果；

　　5. 软琼脂形成实验中，底层琼脂提供细胞支撑，防止贴壁；上层琼脂促进细胞分散；顶层的培养基可防止琼脂干燥并提供营养，培养基中也可加入药物处理。

　　6. 琼脂恒温水浴时要保持在42℃左右，确保琼脂层均匀，避免温度过低凝固，或过高损伤细胞。

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